低溫電泳槽：配備帶有冷卻裝置的電泳槽，通過循環(huán)冷卻水或內(nèi)置制冷系統(tǒng)，控制電泳槽內(nèi)的溫度。一般將溫度設(shè)定在 15 - 25℃，能有效維持凝膠和緩沖液的溫度穩(wěn)定，減少熱效應(yīng)的影響。

冷室或冷庫：如果條件允許，可將電泳設(shè)備放置在冷室或冷庫中進(jìn)行電泳。冷室或冷庫的低溫環(huán)境有助于散熱，能輔助維持電泳過程中的溫度穩(wěn)定，進(jìn)一步降低熱效應(yīng)。

選擇合適的緩沖液：不同的緩沖液具有不同的熱穩(wěn)定性和散熱能力。例如，TBE 緩沖液的緩沖能力較強(qiáng)，在高電場強(qiáng)度下能更好地維持體系的 pH 穩(wěn)定，減少因 pH 變化引起的熱效應(yīng)。同時，其離子強(qiáng)度適中，可降低電泳過程中的產(chǎn)熱。

預(yù)冷緩沖液：在電泳前將緩沖液放入冰箱或冷柜中預(yù)冷至 4 - 10℃，然后再加入電泳槽中。預(yù)冷的緩沖液在電泳初期能吸收較多熱量，延緩溫度上升的速度。

更換緩沖液：電泳過程中，隨著熱量的產(chǎn)生，緩沖液的溫度會逐漸升高。及時更換緩沖液，可保持緩沖液的散熱能力，降低熱效應(yīng)。一般建議在電泳過程中每隔一段時間（如 1 - 2 小時）更換一次緩沖液。

降低電壓：在保證核酸分子能夠有效分離的前提下，適當(dāng)降低電場強(qiáng)度，即降低電壓。較低的電壓會減少電泳過程中的產(chǎn)熱量，從而降低熱效應(yīng)。例如，將電場強(qiáng)度從 12 V/cm 調(diào)整到 10 V/cm 或更低，根據(jù)核酸分子的大小和分離要求進(jìn)行優(yōu)化。

縮短電泳時間：盡量縮短電泳時間，減少熱量的積累。可通過優(yōu)化凝膠濃度、緩沖液條件等方法，提高核酸分子的遷移速度，在保證分離效果的同時縮短電泳時間。

稀釋樣品：適當(dāng)稀釋核酸樣品，降低樣品中的離子濃度，減少電泳過程中的電流，從而降低產(chǎn)熱。但要注意樣品濃度不能過低，以免影響檢測靈敏度。

避免樣品堆積：確保樣品均勻地加入到加樣孔中，避免樣品在加樣孔中堆積。堆積的樣品會導(dǎo)致局部電流過大，產(chǎn)生過多熱量，而均勻分布的樣品能使電流更均勻地通過凝膠，減少熱效應(yīng)。